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pcr應(yīng)用中確認(rèn)RNA的質(zhì)量常用的三種方法
更新時(shí)間:2021-03-28   點(diǎn)擊次數(shù):5195次

實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)是通過測(cè)定RNA的轉(zhuǎn)錄水平來評(píng)估基因的活力。RNA樣本提取的質(zhì)量直接影響基因表達(dá)分析。影響RNA品質(zhì)的因素有以下三種:RNA濃度、RNA純度和RNA完整性。

檢測(cè)RNA濃度、純度和完整性的方式主要有以下幾種:

紫外分光光度計(jì)法:

測(cè)量260nm吸收值計(jì)算RNA濃度,測(cè)量260nm/280nm吸收值的比值,用于評(píng)估RNA純度。需要注意的是:在檢測(cè)核酸物質(zhì)時(shí)應(yīng)該在固定的PH溶液中進(jìn)行。

260nm/280nm的比值范圍在 1.9~2.1 之間。<1.9,說明有蛋白質(zhì)殘留;>2.1,說明RNA可能發(fā)生降解。

瓊脂糖凝膠電泳:

完整的RNA通常有三條帶,最亮的是28S條帶,其次是18S條帶,最淡的是5S條帶(部分試劑盒提取時(shí)會(huì)過濾掉5S條帶)。通過瓊脂糖凝膠電泳可以檢測(cè)28S和18S的比值。該方法主要用于檢測(cè)RNA的純度和完整性。

如果28S和18S條帶明亮、清晰、條帶銳利,28S的亮度在18S條帶的兩倍以上,我們認(rèn)為RNA的質(zhì)量好。

若RNA條帶出現(xiàn)彌散,原因可能:RNA被核酸酶降解、電壓或電流過大、上樣量過高或過低等。

 

上述兩種方法在實(shí)驗(yàn)室比較常用,此外還有幾種檢測(cè)方式供大家選擇。

熒光染料檢測(cè):

通過熒光染料和RNA結(jié)合,熒光活性增強(qiáng)。此方法的靈敏度較高,主要用于檢測(cè)RNA的濃度。

微毛細(xì)管電泳:

可使用軟件的RIN(RNA Integrity Number)分?jǐn)?shù)評(píng)估,10為RNA完整性好,0為最差。此方法的靈敏度和分辨率較高,可用于檢測(cè)RNA濃度、純度和完整性。

3’-5’完整性檢測(cè):

是在一個(gè)RNA樣本中檢測(cè)GAPDH mRNA的完整性來代表所有RNA的完整性,主要用于檢測(cè)RNA的完整性。

 

得到高品質(zhì)RNA的小建議:

1、盡量避免RNA酶污染,使用無RNA酶的耗材和試劑,建議將擴(kuò)增前后的場(chǎng)所分開。

2、盡量減少采樣時(shí)間,樣品處理后快速冷凍,可以加入RNA保護(hù)劑。

3、RNA提取過程中可以使用RNA酶抑制劑。

4、存儲(chǔ)過程中避免反復(fù)凍融。

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